材料作为中药有效成分的给药载体研究奠定基础。
1 材料
S4800型扫描电镜(日本Hitachi公司);Zetasizer Nano ZS90型激光粒度及电位分析仪(英国Malvern公司);UV-2401PC紫外分光光度计(日本Shimadzu公司);optima L-80xp超速冷冻离心机(美国Beckman公司);BS210S电子天平(德国Sartorius公司)。HeLa细胞购自中国科学院细胞库,胎牛血清、RPMI1640培养基均购自Gibco公司。姜黄素购自成都科龙化工有限公司;正硅酸四乙酯(tetraethoxysilane,TEOS)和十六烷基三甲基溴化铵(cetyltrimethylammonium bromide,CTAB)购自上海阿拉丁试剂有限公司;其他试剂均为分析纯,水为重蒸水。
2 方法与结果
2.1 MSN的制备
根据参考文献[11]的方法并加以改进:将0.56 g CTAB置于250 mL圆底烧瓶中,加入150 mL蒸馏水使其完全溶解,然后加入6 mL 2 mol·L-1的NaOH溶液,水浴升温至60 ℃,持续高速搅拌下缓慢滴加6 mL TEOS,并维持恒温高速搅拌2 h后,经抽滤、洗涤后得到白色固体,转入三口烧瓶中,加入150 mL酸性乙醇溶液(乙醇-盐酸4∶1)充分分散后,80 ℃加热回流3 h除去CTAB,再次经抽滤、洗涤后,50 ℃真空干燥,即得MSN。
2.2 Cur-MSN的制备
参照载药介孔纳米粒常用的制备方法[8-13],分别采用溶剂挥发法以及浸渍离心法,以包封率和载药量为指标,筛选Cur-MSN的最佳制备方法。
溶剂挥发法:取上述MSN粉末40 mg各4份,分别滴加10 mL含有不同浓度Cur的80%乙醇溶液,使药物与载体的质量比分别为1∶1,1∶2,1∶4,1∶6,水浴超声至MSN完全分散后,室温下继续磁力搅拌,挥去乙醇,得到带有乳光的黄色溶液。
浸渍离心法:取上述MSN粉末40 mg各4份,分别滴加5 mL含有不同浓度Cur的无水乙醇溶液,使药物与载体的质量比分别为1∶1,1∶2,1∶4,1∶6,水浴超声至MSN完全分散后,确保MSN粉末被溶液完全浸没,于恒温摇床上振摇48 h后,将胶体溶液于15 000 r·min-1离心15 min,沉淀经洗涤后真空干燥,上层清液保留用于包封率和载药量的测定。
与浸渍离心法相比,采用溶剂挥发法制备Cur-MSN可以获得更高的包封率和载药量,见表1;当Cur-MSN比例达到1∶4时,Cur-MSN包封率可达到(75.58±5.37)%。为了兼顾较高的包封率和载药量,因此选择Cur-MSN 1∶4,采用溶剂挥发法进行制备Cur-MSN。
2.3 Cur-MSN包封率和载药量的测定
2.3.1 标准曲线的建立 精密称取Cur对照品,用无水乙醇配置成0.105 0 g·L-1的溶液,得对照品储备液。精密量取储备液适量,分别置于10 mL量瓶中,用0.2% SDS溶液稀释至刻度,摇匀,得到浓度分别为0.526 0,1.052,2.104,4.208,6.312,8.416 mg·L-1工作液,运用紫外分光光度计测定各浓度样品在425 nm检测波长下的吸光度[5]。将吸光度和浓度进行回归,得到回归方程Y=0.137X-0.002,r=0.999 9,表明Cur在0.526 0~8.416 mg·L-1线性关系良好。高、中、低3种浓度的回收率,分别为(102.1±1.36)%,(98.5±3.76)%,(95.9±4.35)%,日内精密度为2.7%,日间精密度为3.6%,符合要求。
2.3.2 包封率和载药量的测定 取制备好的Cur-MSN溶液,于15 000 r·min-1离心15 min,收集上清液,沉淀加入等量0.2% SDS溶液洗涤2次,与上清液合并,精密吸取适量合并液,用0.2% SDS溶液稀释后,按照2.3.1项下方法测定Cur含量(W1);沉淀干燥后称重(W2);Cur初始投入量记为W3。根据下列公式计算包封率(encapsulation efficiency,EE)和载药量(load efficiency,LE)。
EE=(W3-W1)/W3×100%
LE=(W3-W1)/W2×100%
2.4 Cur-MSN优化制备工艺
通过上述条件优化,确定了Cur-MSN的制备工艺:取MSN粉末40 mg,逐滴加入10 mL含有10 mg Cur的80%乙醇溶液,水浴超声将MSN完全分散后,室温下继续磁力搅拌,挥去乙醇,得到带有乳光的黄色溶液,即得Cur-MSN溶液。取适量Cur-MSN溶液,用蒸馏水数倍稀释后,激光粒度及电位分析仪测定Cur-MSN的粒径和Zeta电位。所得Cur-MSN的平均粒径为75.8 nm,PDI为0.281,Zeta电位为-30.1 mV,见图1。
2.5 扫描电镜观察Cur-MSN的形态
取适量Cur-MSN样品溶液,用无水乙醇充分稀释并超声使其均匀分散,随后将样品溶液滴于样品平台上,用导电胶固定后喷金。电压加至5 kV,扫描电镜观察样品外观形貌、分散性和均匀性。Cur-MSN的外观为球形,大小均一,纳米粒表面仍清晰可见细小的介孔,见图2。
2.6 3批Cur-MSN包封率和载药量
制备了3批Cur-MSN,经计算,Cur-MSN的平均包封率为(72.55±2.01)%,载药量为(16.21±1.12)%,见表2。
2.7 Cur-MSN体外释药
将Cur-MSN适当稀释后,精密吸取1 mL(含Cur约1.0 mg)转入预处理好的透析袋内(截留相对分子质量为3 500);另取1 mL Cur原药储备液(含Cur约1.0 mg)亦转入预处理好的透析袋内,密封后分别置于将透析袋放入盛有200 mL 0.2% SDS溶液的烧杯中,于37 ℃恒温水浴振荡。分别于0.5,1,2,4,6,12,24,48,72,96 h取透析液1 mL,同时补充等量的释放介质。平行重复3次。按照2.3项下方法测定Cur的含量,计算累计释放率。Cur原药在6 h内基本完全释放,Cur-MSN在前6 h有突释现象,应该是纳米粒溶液中未包载及部分吸附在纳米粒表面的Cur造成的,此后Cur-MSN展示了明显的缓释特征,96 h释放了83.5%,见图3。
2.8 Cur-MSN体外抗肿瘤活性研究
HeLa细胞采用含有10%胎牛血清的RPMI1640培养基,于37 ℃的二氧化碳(5%)培养箱中培养。取对数生长期的HeLa细胞,胰酶消化后制成1×105个/mL的细胞悬液,接种于96孔板中。贴壁生长24 h后,分别加入适量的Cur以及Cur-MSN贮备液(Cur用DMSO溶解制备贮备液,然后用培养基稀释到最终浓度[14]),使其终浓度分别为0.1,0.5,1,2,5,10,20,40 mg·L-1(均按Cur计算),继续培养24 h,PBS洗涤细胞3次,加入20 μL 0.5%MTT溶液及100 μL,3~4 h后小心吸出孔内溶液,加入150 DMSO溶解底部结晶,于酶标仪570 nm测定各孔A,比较Cur和Cur-MSN的抗肿瘤活性。Cur与Cur-MSN对HeLa细胞的杀伤作用均呈现浓度依赖性,但两者的杀伤作用相近,经计算IC50分别为18.41,19.40 mg·L-1,说明将Cur包载于MSN内,形成的Cur-MSN同样具有较强的体外抗肿瘤活性,为后期的体内研究奠定了基础,见图4。
3 讨论
本研究首次报道了运用MSN为载体包载Cur原药,制备得到的Cur-MSN解决了Cur水溶性差的缺点,并利用MSN易于被细胞吞噬的性质,达到良好的抗肿瘤目的。传统有机高分子纳米粒在载带中药有效成分时,普遍存在载药量小不能达到有效剂量、对药物性质要求高的问题,而无机MSN具有载药量大、对药物无选择性的特点,对于中药有效成分载药具有明显优势。但目前关于MSN纳米粒载药报道多局限在化学药物类,对中药有效成分的载药报道鲜见,而化学药物与中药有效成分在用药剂量、药物性质等方面均有明显差异,因此,研究MSN对中药类的载药性质,具有重要意义。本研究对MSN载带姜黄素的性质考察,将为MSN进一步推广应用于中药类载药奠定基础。
据文献报道,MSN载药常用的方法有溶剂挥发法和浸渍离心法。实验发现浸渍离心法虽然操作方便,相对省时,但是制备的纳米粒包封率较低,这与徐爱仁等[12]报道不一致,分析原因可能与Cur的溶解性有关,水不溶性药物包载于MSN时,选择溶剂挥发法可获得更高的包封率。且本法工艺简便,可有效避免在制备过程中姜黄素的降解。
Cur是生物活性物质,同时也是不稳定、易降解的物质。研究表明,Cur在弱酸性及碱性条件下易水解,表面活性剂能有效降低Cur的水解,其中SDS对Cur溶液的稳定作用最强[15];加之Cur在水中的溶解度极低(<0.3 mg·L-1),Cur在SDS溶液中的溶解度能大幅提升,因此,为了确保在释放试验中达到漏槽条件并维持Cur的稳定性,选择0.2% SDS水溶液作为溶出介质。同时,由于Cur对光照亦敏感,因此长时间体外释放实验建议避光进行。
本研究所制备的MSN载体为无机疏水性材料制成,对低水溶性药物姜黄素有强吸附性,可作为姜黄素的优良贮库。研究证实,MSN易于富集于肝脏和脾脏[16],是一种有潜力的肝靶向载体;另外,通过MSN表面硅醇基嫁接各种官能团可以很容易的进行表面改性处理,例如进行pH敏感、还原响应性基团修饰,从而达到肿瘤微环境响应性,更好地定位于肿瘤组织,且表面改性后不会破坏其高度有序性及介孔结构[17]。后续研究中,将着重考察Cur-MSN及其表面修饰产物在动物体内的组织分布及肿瘤靶向性。
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[责任编辑 孔晶晶]
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